Расходные Материалы и Оборудование

Резьбовые пробирки SSIbio (США)

Пробирки Eppendorf Safe-Lock Tubes, Eppendorf (Германия)

Описание

Качество пробирок Eppendorf Safe-Lock Tubes является результатом 50 лет непрерывного совершенствования и разработок. Оригинальные пробирки Safe-Lock защищают вашу пробу благодаря превосходной устойчивости к центрифугированию, оптимизированной герметичности и надежному предотвращению испарения пробы.

Доверьтесь настоящим пробиркам Eppendorf Safe-Lock Tubes, потому что ваши пробы заслуживают только самого лучшего.

Откройте новые Eppendorf Conical Tubes 25 mL! С новыми пробирками Eppendorf Conical Tubes 25 mL ваша работ с коническими пробирками перейдет на новый уровень. Если требуется подготовка, центрифугирование, перемешивание или хранение проб объемом более 15 мл, но намного меньше 50 мл, у ученых часто нет другого выбора, кроме традиционных конических пробирок с завинчивающимимся крышками объемом 15 мл или 50 мл. Теперь решение этой дилеммы найдено благодаря новой Eppendorf Conical Tubes 25 mL. У них такой же диаметр, как и у конической пробирки объемом 50 мл, но меньшая высота. Таким образом, глубина погружения дозаторов в пробирку значительно ниже, чем у конической пробирки объемом 50 мл. Новая пробирка объемом 25 мл есть в вариантах с завинчивающейся крышкой и с инновационной крышкой SnapTec™. Это запатентованное решение представляет собой уникальную защелкивающуюся крышку в сегменте конических пробирок.

♦♦♦  ОРГАНИЗАЦИЯ ПЦР-ЛАБОРАТОРИИ 
Способность ПЦР нарабатывать ДНК даже с единственной подходящей матричной молекулы накладывает определенные условия на организацию лаборатории, использующей данную методику. Если лабораторное оборудование или реактивы бу­дут загрязнены продуктами предыдущих реакций, это может привести к получению некорректных результатов последую­щих ПЦР-исследований с теми же праймерами. Во избежание загрязнения экспериментальных реакций ранее полученными фрагментами (контаминации). исследователь должен соблю­дать ряд требований при работе с ПЦР. 

1.    Необходимо организовать отдельные помещения для эта­пов: 1) очистки нуклеиновых кислот; 2) приготовления реакций (допустимо
       объединение 1 и 2); и 3) анализа продуктов амплификации.
2.    Каждый из указанных выше этапов должен осуще­ствляться отдельным набором автоматических пипеток и с использованием
       дноразовых расходных материалов.
3.    Желательно использовать наконечники и пробирки с маркировкой "DNAse and RNAse free".
4.    Желательно, чтобы наконечники для пипеток были с фильтрами (aerosol-resistant tips).
5.    Каждый из процессов (очистка ДНК, приготовление ре­акции и, если требуется, нанесение образцов после реак­ции в гель)
       необходимо выполнять в новых одноразовых перчатках (без талька).
6.    Необходимо избегать перемещения оборудования или реактивов из одного помещения в другое ( особенно из электрофоретической
       комнаты в другие помещения).
7.    Желательно проводить этапы приготовления реакций и электрофорез силами разных сотрудников, а при выполне­нии всех этапов
       одним сотрудником, желательно прово­дить гель-электрофорез в конце рабочего дня, чтобы после электрофоретической
       комнаты не заходить в комнаты для очистки ДНК и приготовления реакций.
8.    Очистку ДНК и приготовление реакций желательно про­водить в ПЦР-боксах (или ламинарах с выключенным воздушным потоком,
        поскольку воздушный поток повы­шает вероятность кросс-контаминации образцов) с УФ-­лампами,
        которые необходимо включать на ночь.
9.    Желательно использовать собственный набор реактивов для ПЦР и хранить эти реагенты в виде небольших пор­ций (аликвот).
10.   Необходимо включать в экспериментальную постановку контрольные реакции: отрицательный контрольный об­разец. в котором есть
        все компоненты реакции кроме матричной ДНК и положительный контрольный обра­зец, в котором реакция должна пройти
        обязательно ( от­сутствие результата в положительном контрольном образце будет свидетельствовать об ошибках в приготовлении
        реакции или испорченных реактивах). Наличие продуктов амплификации в отрицательном контрольном образце свидетельствует о
        загрязнении оборудования или реактивов продуктами ПЦР предыдущих исследований. ♦♦♦

{ПЦР "в реальном времени", Под редакцией д-ра биол. наук Д. В. Ребрикова, 2009 г.}